Режим работы в Москве, Минске, Екатеринбурге с 9:00 до 19:00
8-800-707-73-79 / 495-737-73-79

Опыт применения

Исследование лечебно-профилактической эффективности

лекарственного препарата Салколи Моно ВР (жидкий)

при сальмонеллезе у цыплят-бройлеров.

Проведена проверка лечебно-профилактической эффективности лекарственного препарата Салколи Моно ВР (жидкий) при сальмонеллезе у цыплят-бройлеров.

Работа по изучению эффективности лекарственного препарата проводилась в период с 20 ноября по 19 декабря 2013 года на научно-экспериментальной базе ОПХ «Манихино».

Для изучения эффективности Салколи Моно ВР (жидкий) были сформированы по принципу аналогов опытные и контрольные группы птиц, содержащие по 22 цыпленка - бройлера кросса Росс 308  в группе.

Группа 1 – чистый контроль (получали воду)

Группа 2 – контроль с заражением сальмонеллой (получали воду)

Группа 3 – опытная группа с заражением сальмонеллой  (выпаивали воду, содержащую по 0,5 дозы препарата Салколи  МОНО ВР на 1 литр)

Группа 4 – опытная группа с заражением сальмонеллой (выпаивали воду, содержащую по 1,0 дозе препарата Салколи МОНО ВР на 1 литр)

Группа 5 – опытная группа с заражением сальмонеллой (выпаивали воду, содержащую по 2,0 дозы препарата Салколи МОНО ВР на 1 литр)

Группа 6 – опытная группа с заражением сальмонеллой ( с 1 по 14 день выпаивали воду, содержащую по 1,0 дозе препарата Салколи МОНО ВР на 1 литр, а последние 7 суток до окончания опыта цыплята получали воду  с 2 дозами препарата).

Цыплята  контрольной (группа 2) и опытных групп (группы 3-6)  в возрасте 15 суток были заражены перорально культурой вирулентного штамма S.enteritidis №92 в дозе 2,36 х109 микробных клеток на голову.

 

Для оценки эффективности препарата учитывали следующие показатели:

  1. Живая масса цыплят (еженедельно, путем взвешивания);
  2. Расход корма в каждой группе цыплят;
  3. Сохранность поголовья  (с определением причин гибели);
  4. Количество сальмонеллоносителей в опытных и контрольных группах цыплят в течение и по окончании опыта;
  5. Степень инфицированности органов цыплят (печень) сальмонеллами  в течение и по окончании опыта. 

Живую массу цыплят-бройлеров определяли путем индивидуального взвешивания  каждой головы в группе еженедельно. Затем определяли среднюю массу  цыпленка в группе.

Расход  (конверсию) корма цыплятами контрольных и опытных групп учитывали в течение опыта ежедневно путем взвешивания подаваемого корма и еженедельным снятием остатков корма в кормушках в день взвешивания цыплят.

Для  выявления цыплят носителей сальмонелл и анализа инфицированности печени цыплят сальмонеллами,  на 7 и 14 сутки после заражения, от каждой группы цыплят были отобраны по  3 головы, а на 21сутки (окончание опыта) – по 6 цыплят.

При определении наличия сальмонелл, измельченные кусочки печени цыплят помещали в забуференную пептонную воду (M 614 Buffered Pepton Water, Himedia, India)  в соотношении 1:9. После 18 -20часов культивирования при температуре 37 оС, исследуемый материал в соотношении 1:100

(0,1 мл на 10мл среды) пересевали в среду Раппапорта –Вассилиадис (M 1137 Modified Rappaport Vassiliadis Medium, Himedia, India)  и  культивировали 18-24 часа при 42 оС . Из среды Раппопорта –Василлиадис проводили посевы на плотные диагностические среды – среду Эндо (M 029R Endo Agar Special, Himedia, India) и XLD агар (M 031 Xylose-Lysine Deoxycholate Agar, Himedia, India), которые выдерживали в термостате при  37 оС в течение18 -20часов. Принадлежность культур к серовару S. enteritidis в характерных колониях, сформировавшихся на плотных средах, подтверждали с помощью   моноклональных агглютинирующих сальмонеллезных сывороток  О-9, Н-g  и Н-m (Enterocolon  Anti-Salmonella,  Sifin, Germany).

Для определения степени инфицированности сальмонеллами цыплят опытных и контрольных групп навеску печени  помещали в стерильный стеклянный гомогенизатор,  добавляли 10 см3 стерильного физиологического раствора и измельчали. Затем из исходной суспензии  печеночной ткани  приготавливали ряд  десятикратных разведений  в  физиологическом  растворе – 10-2, 10-3.  Суспензию  ткани из десятикратных разведений,  в объеме 0,1 см3 высевали  на хромогенный  агар  для сальмонелл  (CM 1007 Salmonella Chromogenic Agar Base,  OXOID, England),   с селективной добавкой ( SR0194E  Salmonella Selective Supplement,  OXOID, England).  На каждое разведение использовали  по 3 чашки  с агаром.

После культивирования в течение 18-20 часов  при температуре 37 оС определяли среднее количество сформировавших на хромогенном агаре  колониеобразующих единиц,  имеющих характерный для сальмонелл пурпурный цвет.

Принадлежность культур к серовару S. enteritidis в характерных колониях,  подтверждали с помощью   моноклональных агглютинирующих сальмонеллезных сывороток  О-9, Н-g  и Н-m (Enterocolon  Anti-Salmonella,  Sifin, Germany).

Результаты испытания.

В 8-дневном возрасте путем аналога сформировали 6 групп цыплят-бройлеров кросса Росс 308, смешанных по полу по 22 головы в каждой груп-пе и разместили их в двух-ярусные клеточные батареи. Каждая группа со-держалась в 4 клетках распределенных в 2 клетки на 1- ярусе и в 2 клетки на 2-ярусе, соответственно. На 1-ярусе было помещено по 6 голов в клетку и на 2-ярусе по 5 голов цыплят, соответственно.

Плотность посадки цыплят, питательность корма, фронт кормления, фронт поения, режим освещения и микроклимат обеспечили в соответствии с рекомендациями компании «Авиаген» (племенная компания – разработчик кросса) для данного кросса цыплят-бройлеров Росс 308.    

Полученные экспериментальные данные были обработаны методами ва-риационной статистики (Плохинский Н.А. Математические методы в биоло-гии. –М.: Изд. Моск. ун-та, 1978. -265 с.).

Живую массу цыплят-бройлеров определяли путем индивидуального взвешивания  каждой головы в группе еженедельно. Результаты приведены в таблице 1и на рисунках 1 и 2.

Табл.1 Средняя живая  масса цыплят в группах в течение опыта.

 

Группа

цыплят

Средняя масса цыплят в граммах,

 в возрасте

8 дней

15 дней

22 дней

29 дней

36 дней

1

193

590

1002

1598

2331

2

195

595

949

1543

2268

3

193

587

1001

1644

2433

4

194

589

1042

1702

2486

5

193

585

1050

1697

2480

6

195

593

1039

1694

2478

Как следует из данных этой таблицы, продуктивность цыплят-бройлеров зависела от заражения сальмонеллой и уровня дозы потребляемого препарата Салколи Моно ВР. Так, уже в 22-дневном возрасте (через 7 суток после заражения) наиболее высокая живая масса была у бройлеров в опытных группах 4-6. Живая масса цыплят в опытных группах 4 – 6 была достоверно выше, чем в контрольной группе 2 (Р<0,01). В чистой контрольной группе 1 живая масса цыплят также была достоверно выше по сравнению с контрольной группой 2   (Р<0,05). В опытной группе 3 цыплята по живой массе также превосходили контрольную группу 2 на 52 г, однако этот показатель не был достоверным в возрасте 22 дня.

В 29-дневном возрасте живая масса цыплят-бройлеров в группах 4-6 была достоверно выше, чем в контрольной группе 2 (Р<0,01, Р<0,05, соответственно). В этом возрасте цыплята 3-опытной группы тоже опережали по данному показателю контрольные группы 1 и 2 на 46 г и 101 г , соответственно.

В конце срока выращивания в 36 -дневном возрасте цыплята-бройлеры  опытных групп 3 и 4 достоверно превосходили контрольную группу 2   (Р<0,05). Бройлеры в опытных группах 5 и 6 также превосходили по живой массе  своих сверстников в контрольной группе 2   при более высокой степени достоверности Р<0,01 за счет более выравненной живой массы.

Цыплята-бройлеры опытных групп 3-6 по живой массе в конце выращивания также достоверно превосходили своих сверстников в контрольной группе 1 (Р<0,05).

Расход  (конверсия) корма цыплятами контрольных и опытных групп в течение опыта учитывали ежедневно путем взвешивания подаваемого корма. Еженедельно, в день взвешивания цыплят-бройлеров снимали остатки корма в кормушках. Данные по расходу (конверсии)  корма приведены в таблице 2.

Табл.2 Расход (конверсия) корма в течение опыта  (г/гол.)

 

Группа

Возраст цыплят-бройлеров (дней)

Итого корма (г/гол.)

 

8

15

22

29

36

1

0,864

1,175

1,338

1,485

1,632

3804,2

2

0,864

1,175

1,484

1,632

1,754

3978,1

3

0,864

1,175

1,362

1,452

1,593

3875,8

4

0,864

1,175

1,251

1,394

1,532

3808,5

5

0,864

1,175

1,249

1,390

1,534

3804,3

6

0,864

1,175

1,252

1,389

1,533

3798,8

Сохранность цыплят в течение опыта приведена в таблице 3.

Как следует из представленных данных, в течение 7 суток после заражения погибло 3 цыпленка из группы 2  и 1 цыпленок из 3группы.

При бактериологическом анализе установлено, что причиной гибели цыплят-бройлеров во второй  контрольной и в третьей  опытной группе, являлась септическая форма сальмонеллеза. Заражающий штамм был выделен из крови сердца, печени и селезенки павших цыплят. Сохранность  цыплят по окончании опыта  в группе 2 (контроль)  составила 86,3%, в опытной группе 3 – 95,4%. Во всех других  экспериментальных группах  гибель цыплят отсутствовала.

Табл.3 Сохранность цыплят   после заражения

 

Группа цыплят

Исходное

количество

цыплят

в группе

 (возраст

8 суток)

Доза

заражения

сальмонеллами

(млрд. клеток)

Количество

цыплят

в группе при заражении

(15 суток)

Погибло цыплят

в течение опыта

до достижения возраста

Сохраность

 поголовья

(%)

 

  22 суток

 29 суток

 36 суток

1

(вода)

22

Не

проводилось

22

0

0

0

100

2

(вода)

22

2,36

22

3

3

3

86,3

3

(вода + 0,5 дозы/л

Моно ВР)

22

2,36

22

1

1

1

95,4

4

(вода + 1,0 доза/л

 Моно ВР)

22

2,36

22

0

0

0

100

5

(вода + 2,0 дозы/л

 Мово ВР)

22

2,36

22

0

0

0

100

6

(вода + 1,0 доза/л

 Мово ВР-14 суток, вода + 2,0 дозы/л  Моно ВР, - 7 суток)

22

2,36

22

0

0

0

100

Количество цыплят - носителей сальмонелл и среднее количество клеток заражающего штамма в  1 грамме печени цыплят представлено в таблице 4.

Табл.4 Инфицированность цыплят сальмонеллами в течение опыта

 

Группа цыплят

Исследовано цыплят/

количество носителей

(голов)

Среднее

количество клеток  сальмонелл в 1 гр. печени

Исследовано цыплят/

количество носителей

(голов)

Среднее

количество клеток  сальмонелл в 1 гр. печени

Исследовано цыплят/

количество носителей

(голов)

Среднее

количество клеток  сальмонелл в 1 гр. печени

7 суток после заражения

 14 суток после заражения

 21 сутки после заражения

1

3/0

-

3/0

-

6/0

-

2

3/3

8,06х103

3/3

3,82х103

6/5

5,28х102

3

3/3

7,25х103

3/3

1,37х102

6/0

-

4

3/3

8,52х103

3/2

-

6/0

-

5

3/3

7,86х103

3/1

-

6/0

-

6

3/3

1,02х104

3/2

0,75х102

6/0

-

 

Как следует из представленных данных, через неделю после заражения все цыплята опытных и контрольной групп являлись носителями сальмонелл, их количество в 1 грамме печени было практически одинаковым во всех группах,  и составляло от 7,25х103 до 1,02х104 колониеобразующих единиц.

Через 14 суток после заражения, не все исследованные цыплята из групп  4, 5 и 6 являлись  носителями сальмонелл.  Причем, определить  количество клеток возбудителя  в  печеночной ткани цыплят  опытных групп 4 и 5  было невозможно.

По окончании исследования (на 21 сутки после заражения), цыплята - носители сальмонелл выявлены только в контрольной группе, с  средним содержанием возбудителя  в 1 грамме печени - 5,28х102 КОЕ.

Заключение

В результате  комиссионного испытания лечебно-профилактической эффективности лекарственного препарата Салколи Моно ВР (жидкий) при сальмонеллезе у цыплят-бройлеров установлено следующее.

Введение цыплятам-бройлерам Салколи Моно ВР (жидкий) с питьевой водой  способно повышать живую массу птиц и предохранять их  от гибели при заражении большими  дозами вирулентного штамма  сальмонелл.

Применение Салколи Моно ВР (жидкий)   способствует уменьшению расхода корма при выращивании цыплят-бройлеров.

Выпаивание  Салколи Моно ВР (жидкий) инфицированным цыплятам способно санировать их организм от возбудителя сальмонеллеза после 2-3 недель ежедневного применения.  

Остались вопросы?